植物组织培养论文

植物激素浓度和灭菌消毒时间对植物组织

培养状况影响的探究

一.植物祖师培养综述 1.1概念

植物的组织培养广义又叫离体培养，指从植物体分离出符合需要的组织、器官或细胞、原生质体等，通过无菌操作，在人工控制条件下进行培养以获得再生的完整植株或生产具有经济价值的其他产品的技术。狭义组织培养是指用植物各部分组织，如形成层、薄壁组织、叶肉组织、胚乳等进行培养获得再生植株，也指在培养过程中从各器官上产生愈伤组织，愈伤组织再经过再分化形成再生植物。 1.2 研究历史

19世纪30年代，德国植物学家施莱登和德国动物学家施旺创立了细胞学说，根据这一学说，如果给细胞提供和生物体内一样的条件，每个细胞都应该能够独立生活；1902年，德国植物学家哈伯兰特细胞全能性的理论是植物组培的理论基础。1958年，一个振奋人心的消息从美国传向世界各地，美国植物学家斯蒂瓦特等人，用胡萝卜韧皮部的细胞进行培养，终于得到了完整植株，并且这一植株能够开花结果，证实了哈伯兰特在五十多年前关于细胞全能的预言。近几十年来植物组织培养技术已经发展成为一项新兴无性繁殖技术。 1.3技术原理

植物组织培养即植物无菌培养技术，又称离体培养，是根据植物细胞具有全能性的理论，利用植物体离体的器官(如根、茎、叶、茎尖、花、果实等）、组织（如形成层、表皮、皮层、髓部细胞、胚乳等）或细胞（如大孢子、小孢子、体细胞等）以及原生质体,在无菌和适宜的人工培养基及温度等人工条件下，能诱导出愈伤组织、不定芽、不定根，最后形成完整的植株。 1.4培养特点

1.4.1培养条件可以人为控制

组培采用的植物材料完全是在人为提供的培养基和小气候环境条件下进行生长，摆脱了大自然中四季、昼夜的变化以及灾害性气候的不利影响，且条件均一，对植物生长极为有利，便于稳定地进行周年培养生产。 1.4.2生长周期短，繁殖率高

组培是由于人为控制培养条件，根据不同植物不同部位的不同要求而提供不同的培养条件，因此生长较快。另外，植株也比较小，往往20-30天为一个周期。所以，虽然组培需要一定设备及能源消耗，但由于植物材料能按几何级数繁殖生产，故总体来说成本低廉，且能及时提供规格一致的优质种苗或脱病毒种苗。 1.4.3管理方便，利于工厂化生产和自动化控制

植物组织培养是在一定的场所和环境下，人为提供一定的温度、光照、湿度、营养、激素等条件，极利于高度集约化和高密度工厂化生产，也利于自动化控制生产。它是未来农业工厂化育苗的发展方向。它与盆栽、田间栽培等相比省去了中耕除草、浇水施肥、防治病虫等一系列繁杂劳动，可以大大节省人力、物力及田间种植所需要的土地。 二.实验具体实施方案

2.1培养基贮备液以及各种植物激素配制 2.1.1培养基简述

培养基是植物组织培养中离体植物材料赖以生存的“土壤”。不同组织培养类型、外植体需要的培养基配方不同，组织培养是否成功，培养基的选择具有重要作用。目前常用的培养基有MS、B5、White等。无论何种培养基，都由矿物营养、维生素、碳源、植物激素、有机附加物等无类物质组成。在植物组织培养中应该培养植物的种类和部位，选择最适的培养基，才能获得植物组织培养的成功。本实验以MS为基本培养基。 2.1.2 仪器试剂 仪器和用具

分析天平、恒温水浴锅、电炉、量筒、移液管、烧杯、容量瓶、试剂瓶等 试剂

MS培养基、植物激素BA、植物激素NAA 2.1.3步骤

1）根据扩大倍数和配制母液量计算每种化合物称取量；

2）称取大量元素化合物，分别溶解后顺次逐个加入并混合，加水定容止所需体积；

3）称取微量元素化合物，分别溶解后顺次逐个加入并混合，加水定容止所需体积；

4）称取FeSo4 .7H2O和Na2—EDTA，分别溶解后混合，加水定容止所需体积； 5）称取各种维生素和氨基酸，分别溶解后混合，加水定容止所需体积； 6)称取25mgBA先溶解于1mol/L HCL中，再加水定容至25ml（1mg/ml）； 7）称取25mgNAA，用NaOH溶解后再加水定容至25ml（1mg/ml）。 附表：MS培养基母液配制表

2.1.4注意事项

1)注意大量元素母液配制的程序： 除钙盐外，其他大量元素分别称量并按顺序融于蒸馏水中，钙盐单独配置，组合混合后，用蒸馏水定容；

2)微量元素母液配制的小窍门：因其用量小，为称量方便及精确起见常配置成100或1000倍母液；

3)注意不同母液的储存方法：激素母液装入棕色试剂瓶中，铁盐，有机母液，激素母液放于4度冰箱中，大量元素和微量元素母液常温下保存于柜子中，NaOH瓶子的瓶塞上应缠一圈纸。 2.2培养基配制和灭菌

2.2.1愈伤组织诱导培养基配制

1）计算各种母液用量（按配置1000mlMS培养基计算）

2）每组取50ml的烧杯一只，按上述用量用量筒或移液管（不能混用 ），量取或吸取各种母液，放于烧杯中，同时加上激素BA（浓度2mg/l）备用； 3）每组取1000ml的烧杯一只，加300ml蒸馏水，加入琼脂6g，在石棉网上加热溶解，称取30g蔗糖放入溶解的琼脂中，同时加入各种取好的母液，用玻璃棒不断搅拌混合，并加蒸馏水至1000ml；

4）调整pH:将培养基搅匀，用pH试纸或pH计测其pH值，可用一定浓度的HCL和NaOH调节至5.8；

5）培养基分装、封口：把配置好的培养基趁热分装到培养瓶中，培养基应占试管或三角瓶的1/4-1/3左右为宜，注意不要将培养基沾在管壁上，以免引起污染，分装后立即用封口膜或其他封口物品包扎瓶口，注明培养基名称及配制时间等。 2.2.2继代培养基配制

1）计算各种母液用量（按配置1000mlMS培养基计算）

2）每组取50ml的烧杯一只，按上述用量用量筒或移液管（不能混用 ），量取或吸取各种母液，放于烧杯中，同时加上激素备用； 附表：各组植物激素用量 组别 BA浓度（mg/L） 一 0.1 二 0.5 0 三 0.5 0.1 四 0.5 0.5 NAA浓度（mg/L） 0 3）每组取1000ml的烧杯一只，加300ml蒸馏水，加入琼脂6g，在石棉网上加热溶解，称取30g蔗糖放入溶解的琼脂中，同时加入各种取好的母液，用玻璃棒不断搅拌混合，并加蒸馏水至1000ml；

4）调整pH:将培养基搅匀，用pH试纸或pH计测其pH值，可用一定浓度的HCL和NaOH调节至5.8；

5）培养基分装、封口：把配置好的培养基趁热分装到培养瓶中，培养基应占试管或三角瓶的1/4-1/3左右为宜，注意不要将培养基沾在管壁上，以免引起污染，分装后立即用封口膜或其他封口物品包扎瓶口，注明培养基名称及配制时间等。

2.2.3生根培养基配制

1）计算各种母液用量（按配置1000mlMS培养基计算）

2）每组取50ml的烧杯一只，按上述用量用量筒或移液管（不能混用 ），量取或吸取各种母液，放于烧杯中，同时加上激素备用； 附表：各组植物激素用量 组别 IBA浓度（mg/L） 一 0.1 二 0.5 0 三 0 1.0 四 0 1.5 吲哚丁酸浓度（mg/L） 0 3）每组取1000ml的烧杯一只，加300ml蒸馏水，加入琼脂6g，在石棉网上加热溶解，称取30g蔗糖放入溶解的琼脂中，同时加入各种取好的母液，用玻璃棒不断搅拌混合，并加蒸馏水至1000ml；

4）调整pH:将培养基搅匀，用pH试纸或pH计测其pH值，可用一定浓度的HCL和NaOH调节至5.8；

5）培养基分装、封口：把配置好的培养基趁热分装到培养瓶中，培养基应占试管或三角瓶的1/4-1/3左右为宜，注意不要将培养基沾在管壁上，以免引起污染，分装后立即用封口膜或其他封口物品包扎瓶口，注明培养基名称及配制时间等。 2.2.4培养基灭菌.

2.2.4.1普通人工控制的高压灭菌锅 操作步骤：

1）加水：将水加入高压灭菌锅的外层锅内，水位高度与支柱高度一致，连续灭菌时一定要检查水位高度，及时注水补充，检查水位是灭菌前的必要步骤，因为水量不足会导致高压灭菌锅的损坏；

2）装锅：将分装的培养基和所需的各种用具放入高压灭菌锅的灭菌筒内，不要过于紧密，三角瓶瓶口向上，盖好锅盖，上好螺丝；

3）排气：在增压前将国内的冷空气排尽，使蒸汽能达到各个消毒部位，以保证彻底灭菌，

4）灭菌：当指针移至1.1—1.2Kg/cm2时，将火调小，保持该压力15—20min（在121摄氏度下保持15—20min），切断电源，缓慢放出蒸汽，即达到消毒目的。当

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